货号: D1900
规格: 50T/ 100T
保存: 室温(15℃-25℃) 干燥保存,复检期12个月,2℃-8℃保存时间更长。
试剂盒内容:
试剂盒内容:
|
D1900-50T
|
D1900-100T
|
RNase A
|
1m1
|
1ml×2
|
蛋白酶K
|
1ml
|
1ml×2
|
酵母破壁酶
|
1. 25m1
|
1.25m1×2
|
β-巯基乙醇
|
300ul
|
600ul
|
山梨醇Buffer
|
25m1
|
50m1
|
溶液A
|
10ml
|
20ml
|
溶液B
|
10ml
|
20ml
|
漂洗液
|
15m1
|
15ml×2
|
洗脱液
|
10m1
|
20m1
|
吸附柱
|
50个
|
100个
|
收集管
|
50个
|
100个
|
说明书
|
1份
|
1份
|
产品简介:
本试剂盒采用可以特异性结合DNA的离心吸附柱和的缓冲液系统,提取酵母基因组DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司特有新型材料,能够高效专一吸附DNA,可限度去除杂质蛋白及细胞中其他化合物。提取的基因组DNA片段大,纯度高,质量稳定可靠。使用本试剂盒提取的基因组DNA可用于各种常规操作,包括酶切、 PCR、文库构建、Southern杂交等实验。
操作步骤:
使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶体上的标签。 所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。
1、取酵母细胞(不超过5×107 ce l1 s),12000rpm离心1min.,尽量吸除上清。
2、酵母细胞壁的破除:向酵母菌体中加入470ul山梨醇Buffer。充分悬浮菌休,加入25ul酵母破壁酶和5ul β-巯基乙醇,充分混匀。30℃处理1-2h.,期间可颠倒离心管混匀数次。
3、12000rpm离心lmin,弃上清,收集沉淀。
4、向沉淀中加入200ul溶液A,充分悬浮沉淀,向悬浮液中加入20ul (10mg/ml)的RNase A,充分颠倒混匀,室温放置10min。
5、加入20ul(10mg/ml)的蛋白酶K,充分颠倒混匀。65℃水浴消化15-30min,消化期间可颠倒离心管混匀数次,直至样品消化完全为止。
6、加入200ul溶液B,再加入200ul无水乙醇,充分颠倒混匀,此时可能会出现絮状沉淀,不影响DNA的提取,可将溶液和絮状沉淀都加入吸附柱中,室温放置2min。
7、12000rpm离心2min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
8、向吸附柱中加入700ul漂洗液(使用前请先检查是否己加入无水乙醇)。12000rpm离心1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
9、向吸附柱中加入500ul漂洗液, 12000rpm离心l min, 弃废液,将吸附柱放入收集管中。
10、12000rpm离心2min,将吸附柱敞口置于室温或50℃温箱放置数分钟,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,否则漂洗液中的乙醇会影响后续实验如酶切、PCR等。
11、将吸附柱放入一个干净的离心管中,向吸附膜中央悬空滴加50-200ul经65℃水浴预热的洗脱液,室温放置5min,12000rpm离心l min。
12、离心所得洗脱液再加入吸附柱中,12000rpm离心2 min,即可得到高质量的基因组DNA。
注意事项:
1、样品应避免反复冻融,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量下降。
2、若试剂盒中的溶液出现沉淀,可在65℃水浴中重新溶解后再使用,不影响提取效果。
3、如果实验中的离心步骤出现柱子堵塞的情况,可适当延长离心时间。
4、洗脱缓冲液的体积不少于50ul,体积过小会影响回收效率;洗脱液的pH值对洗脱效率也有影响,若需要用水做洗脱液应保证其pH值在8.0左右(可用NaOH将水的pH值调至此范围), pH值低于7. 0会降低洗脱效率。DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。
5、 DNA浓度及纯度检测:得到的基因组DNA片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1.0相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。OD260/0D280比值应为1.7-1.9,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用去离子水,比值会偏低,因为pH值和离子存在会影响光吸收值,但并不表示纯度低。
本试剂盒采用可以特异性结合DNA的离心吸附柱和的缓冲液系统,提取酵母基因组DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司特有新型材料,能够高效专一吸附DNA,可限度去除杂质蛋白及细胞中其他化合物。提取的基因组DNA片段大,纯度高,质量稳定可靠。使用本试剂盒提取的基因组DNA可用于各种常规操作,包括酶切、 PCR、文库构建、Southern杂交等实验。
操作步骤:
使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶体上的标签。 所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。
1、取酵母细胞(不超过5×107 ce l1 s),12000rpm离心1min.,尽量吸除上清。
2、酵母细胞壁的破除:向酵母菌体中加入470ul山梨醇Buffer。充分悬浮菌休,加入25ul酵母破壁酶和5ul β-巯基乙醇,充分混匀。30℃处理1-2h.,期间可颠倒离心管混匀数次。
3、12000rpm离心lmin,弃上清,收集沉淀。
4、向沉淀中加入200ul溶液A,充分悬浮沉淀,向悬浮液中加入20ul (10mg/ml)的RNase A,充分颠倒混匀,室温放置10min。
5、加入20ul(10mg/ml)的蛋白酶K,充分颠倒混匀。65℃水浴消化15-30min,消化期间可颠倒离心管混匀数次,直至样品消化完全为止。
6、加入200ul溶液B,再加入200ul无水乙醇,充分颠倒混匀,此时可能会出现絮状沉淀,不影响DNA的提取,可将溶液和絮状沉淀都加入吸附柱中,室温放置2min。
7、12000rpm离心2min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
8、向吸附柱中加入700ul漂洗液(使用前请先检查是否己加入无水乙醇)。12000rpm离心1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
9、向吸附柱中加入500ul漂洗液, 12000rpm离心l min, 弃废液,将吸附柱放入收集管中。
10、12000rpm离心2min,将吸附柱敞口置于室温或50℃温箱放置数分钟,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,否则漂洗液中的乙醇会影响后续实验如酶切、PCR等。
11、将吸附柱放入一个干净的离心管中,向吸附膜中央悬空滴加50-200ul经65℃水浴预热的洗脱液,室温放置5min,12000rpm离心l min。
12、离心所得洗脱液再加入吸附柱中,12000rpm离心2 min,即可得到高质量的基因组DNA。
注意事项:
1、样品应避免反复冻融,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量下降。
2、若试剂盒中的溶液出现沉淀,可在65℃水浴中重新溶解后再使用,不影响提取效果。
3、如果实验中的离心步骤出现柱子堵塞的情况,可适当延长离心时间。
4、洗脱缓冲液的体积不少于50ul,体积过小会影响回收效率;洗脱液的pH值对洗脱效率也有影响,若需要用水做洗脱液应保证其pH值在8.0左右(可用NaOH将水的pH值调至此范围), pH值低于7. 0会降低洗脱效率。DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。
5、 DNA浓度及纯度检测:得到的基因组DNA片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1.0相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。OD260/0D280比值应为1.7-1.9,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用去离子水,比值会偏低,因为pH值和离子存在会影响光吸收值,但并不表示纯度低。
相关产品:
产品编号 | 产品名称 | 规格 | 价格 |
E1020 | EB染色液 | 5ml | 40 |
D1010 | 6×DNA Loading Buffer | 5ml/100ml | 40/360 |
T1050 | 5×TBE 缓冲液 | 500ml | 120 |
T1060 | 50×TAE 缓冲液 | 500ml | 180 |
M1060 | D2000 DNA Ladder | 50T/100T | 60/100 |
M1400 | 1kb DNA Ladder | 50T/100T | 90/150 |
G8142 | GoldView II型核酸染色剂(5000×) | 0.5ml | 900 |
D1160 | 酵母质粒提取试剂盒 | 50T/100T | 280/480 |